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IMMUNO-3.2.3 - Cytométrie avancée : Standardisation longitudinale en cytométrie en flux
Accroche introductive
Un atelier conçu et animé par l'Association Française de Cytométrie !Accéder aux sections de la fiche
Call to actions
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Intitulé du programmeIMMUNO-3.2.3 - Cytométrie avancée : Standardisation longitudinale en cytométrie en flux
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mnémonique du programmeFC-705
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Programme organisé par
- Centre de Formation Continue en Santé et Sciences de la vie
- Université libre de Bruxelles
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Type de titreformation continue
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Secteur et domaine d'étudesSciences, technologie, santé/Sciences et techniques/Médecine et Santé/Sciences et technologies/Sciences
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Accessible en reprise d'étudesoui
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Type d'horaireEn journée
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Langues d'enseignementfrançais
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Durée de la formationcourte (2 à 5 jours)
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CampusCampus Biopark Gosselies
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Catégorie / ThématiqueSanté - Sciences biomédicales et pharmaceutiques/Santé - Sciences médicales
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ComplémentValérie HERTVELDT
Ingénieure de formation ULB HeLSci
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E-mail de contact
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Téléphone de contact
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Renseignements supplémentaires
Présentation
Détails
Informations générales
Type de titreformation continue
Durée de la formationcourte (2 à 5 jours)
Langue(s) d'enseignementfrançais
Type d'horaireEn journée
CampusCampus Biopark Gosselies
Catégorie(s) - Thématique(s)Santé - Sciences biomédicales et pharmaceutiques/Santé - Sciences médicales
Faculté(s) et université(s) organisatrice(s) Accessible en reprise d'étudesoui
Tarifs- Tarif plein (pour les 2 jours) : 1150 €
- Tarif réduit pour les institutions académiques, publiques & ASBL (pour les 2 jours) : 800 €
Cette formation m'intéresse !
Intervenants
- Pierre GRENOT, Spécialiste cytométrie à l'INSERM, Strasbourg - Membre de l'AFC (Association Française de Cytométrie)
- Julie CAZARETH, Spécialiste cytométrie au CNRS, Valbonne - Membre de l'AFC (Association Française de Cytométrie)
- Alexia ALFARO, Bio-informaticienne à l'IGR, Paris - Membre de l'AFC (Association Française de Cytométrie)
Partenaires
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Contact : helsci@ulb.be
Présentation
Objectifs de la formation
La standardisation a pour but de produire des résultats fiables et reproductibles au cours du temps. En neutralisant la variabilité de sensibilité des instruments à chaque acquisition, la standardisation du cytomètre va permettre de réduire les écarts de mesure entre les expériences et ainsi comparer de manière plus fine les résultats au cours du temps (pourcentage, moyenne de fluorescence…). Cette méthodologie de standardisation peut être utilisée pour transposer des réglages d’un instrument à un autre et permettre ainsi la comparaison des résultats obtenus sur deux machines différentes.
Objectifs de la formation :
- Connaître les bonnes pratiques de cytométrie en flux
- Mettre en place une méthodologie robuste de génération de données de cytométrie en flux par standardisation des échantillons
- Contrôler la qualité des données avant l'analyse pour des analyses longitudinales
Horaire
En journée
- 18 février (de 9h à 17h) & 19 février 2025 (de 9h à 16h30)
Les + de la formation
- La méthode de standardisation décrite sera applicable à n'importe quel cytomètre en flux
- Toutes les applications en recherche sont concernées (immuno-phénotypage, neurobiologie, oncologie, microbiologie, biologie cellulaire, analyse de vésicules extracellulaires et bien d'autres...)
- La découverte des outils bio-informatiques existants (mise en évidence et correction effet batch, normalisation...)
Calendrier & inscriptions
Pré-requis
- Niveau avancé en cytométrie
- Bonne connaissance de la cytométrie (réglages instruments, compensation, marquage multicouleurs)
- Ou avoir suivi les modules :
Public ciblé
- Responsables de projets, techniciens, technologues, chercheurs du secteur biotechnologique
- Enseignants des Hautes Ecoles
Calendrier & inscriptions
- 18 et 19 février 2025
Programme
PROGRAMME
- Principes généraux de la standardisation longitudinale et applications
- Réglages et préparation du cytomètre pour mettre en place la standardisation (voltages des détecteurs, seuils, compensations, billes 8 pics...)
- Bonnes pratiques de l’acquisition et de l’analyse des données (QC instrument, QC des fichiers FCS, exclusion des doublets, stabilité de l'acquisition…)
- interprétation des données et méthodes d'analyse
- Revue des outils bio-informatiques pour l’analyse des données d’études longitudinales (QC, correction de l’effet batch)
Méthodologie
- 50% théorie - 50% pratique